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书名：植物生理学实验教程（第三版）
定价：26.0
ISBN：9787030440815
作者：侯福林 编
版次：3
出版时间：2015-05
内容提要：
本书依据高等师范院校植物生理学教学大纲,在多年实践和研究的基础上编写而成？全书分基础性实验？综合性实验和研究性实验三部分,共81个实验,涉及植物生理学的基本原理？基础知识和基本实验技能,以利于培养学生分析问题和解决问题的能力？
目录：
目 录 第三版前言 第*部分 基础性实验 第*章 植物的水分代谢 2 实验1 蒸腾速率的测定 2 第二章 植物的矿质营养 4 实验2 植物溶液培养及缺素症的观察 4 实验3 植物对离子的选择性吸收 6 实验4 单盐毒害及离子拮抗作用 7 第三章 光合作用 8 实验5 光合作用的条件及产物 8 实验6 叶绿体色素的提取？分离及理化性质的鉴定 9 第四章 植物的呼吸作用 11 实验7 呼吸速率的测定———广口瓶法 11 实验8 多酚氧化酶活性的测定 12 实验9 愈创木酚过氧化物酶(GPX)活力测定 13 第五章 植物生长物质 15 实验10 赤霉素和脱落酸对种子萌发的影响 15 第六章 植物的生长生理 17 实验11 种子生活力的快速测定 17 实验12 种子萌发过程中淀粉？脂肪？蛋白质的转化 19 第七章 植物的生殖生理 22 实验13 植物光周期反应类型的测定 22 第八章 植物的成熟与衰老生理 24 实验14 维生素C含量的测定 24 实验15 果蔬中有机酸含量的测定 25 实验16 植物激素对器官脱落的调节作用 27 植物生理学实验教程(第三版) 第九章 植物的逆境生理 30 实验17 低温对植物的伤害 30 实验18 植物组织中丙二醛含量的测定 31 第二部分 综合性实验 第十章 植物水分状况的测定 33 实验19 植物含水量的测定 33 实验20 植物相对含水量的测定 33 实验21 植物组织水势的测定 34 实验22 植物组织渗透势的测定 37 第十一章 氮素缺乏对植物生命活动的影响 40 实验23 植物体内硝态氮含量的测定 40 实验24 根系体积的测定 41 实验25 根系活力的测定 42 实验26 硝酸还原酶的提取和测定 46 实验27 细胞有丝分裂指数的测定 47 第十二章 植物光合性能的测定 49 实验28 植物叶片光合速率及其气体交换参数的测定 49 实验29 植物光响应曲线和CO2响应曲线的制作 51 实验30 Chla与Chlb含量的测定(分光光度法) 54 实验31 乙醇酸氧化酶活性测定 56 实验32 光呼吸速率的测定 57 实验33 RuBP羧化酶羧化活性的测定 59 实验34 PEP羧化酶活性的测定 60 实验35 叶绿素荧光动力学技术的应用 62 实验36 植物叶面积的测定 64 第十三章 植物激素的生物鉴定及对生长发育的影响 66 实验37 IAA和ABA的生物鉴定———小麦胚芽鞘法 66 实验38 GA3？CTK？ABA生物鉴定———莴苣种子的发芽试验 68 实验39 GA3诱导大麦种子α 淀粉酶的合成 69 实验40 2,4 二氯苯氧乙酸(2,4 D)对拟南芥幼苗生长的影响 70 实验41 赤霉素对植物花粉体外萌发的影响 73 第十四章 植物生长物质在生产实践中的应用 75 实验42 打破休眠与抑制萌发 75 实验43 促进生长与控制徒长 76 实验44 促进插条生根 78 实验45 选择除草 79 实验46 化学杀雄 79 实验47 球茎(根)花卉的花期调节 80 实验48 防止落花落果 80 实验49 切花的延衰保鲜 81 实验50 黄瓜性别分化 82 实验51 果实催熟 83 第十五章 植物组织培养综合实验技术 85 实验52培养基的配制 85 实验53 灭*？消毒与接种 88 实验54 植物离体培养的形态发生调控与实验观察 91 实验55 试管植株的驯化与移栽 93 第十六章 植物成熟与衰老的某些生理生化变化 95 实验56 ACC含量的测定 95 实验57 H2O2含量的测定 96 实验58 O2产生速率的测定 97 第十七章 逆境条件下植物幼苗的某些生理生化变化 99 实验59 实验材料及胁迫处理 99 实验60 植物细胞质膜透性的测定(电导率法) 99 实验61 脯氨酸含量的测定 100 实验62 SOD活性的测定 101 实验63 过氧化氢酶活性测定 103 实验64 还原型谷胱甘肽含量的测定 104 实验65 谷胱甘肽还原酶活性的测定 105 实验66 抗坏血酸过氧化物酶活性的测定 107 实验67 质膜H+ ATPase水解活性的测定 108 第三部分 研究性实验 实验68 光和K+ 对气孔开度的影响 112 实验69 验证NaCl对盐生植物生长的促进作用 112 实验70 C4植物的筛选 113 实验71 环境因素对植物光合速率的影响 113 实验72 延长果实贮藏时间 114 实验73 观察植物的向性运动 114 实验74 观察植物激素或生长调节剂对植物生长发育的影响 114 实验75 NaCl对种子萌发的影响 115 实验76 胡萝卜体细胞胚发生及植株再生体系的建构 115 实验77 设计无病毒苗培养和产业化生产的具体方案 116 实验78 植物生长调节物质在农业和林业生产中的应用情况调查 117 实验79 ABA对植物抗旱性的影响 118 实验80 塑料大棚栽培中如何调节光？温度？水？肥等因子以达到高产目的 118 实验81 调查目前农业生产中化肥的使用对土壤与环境的影响 118 附录 119 附录1 常用有机溶剂及其主要性质 119 附录2 常用的缓冲溶液 120 附录3 植物组织和细胞培养常用基本培养基成分 122 附录4 实验报告范文 123 参考文献 126
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第*部分 基础性实验 第*章 植物的水分代谢 实验1 蒸腾速率的测定 蒸腾速率是指植物在单位时间内单位叶面积蒸腾掉的水分,是衡量植物需水量的重要指标,受到光照？温度？湿度等许多环境条件的影响？目前测定蒸腾速率的方法很多,如稳态气孔计(steadystateporometer)就是测定蒸腾速率的常规仪器,一般的光合仪也可测定蒸腾速率(实验28),下面介绍两种简易的测定离体叶片或枝条蒸腾速率的方法？ 1 1 蒸腾计法 【实验原理】 蒸腾计是自制装置,利用酸式滴定管制成,将植物枝条通过橡皮管与盛有水的酸式滴定管连接起来,由于蒸腾作用会引起滴定管中水分的减少,由此可计算蒸腾速率？ 【材料与用品】 番茄？向日葵或其他植物的枝条;酸式滴定管？滴定管夹？铁架台？橡皮管？剪刀？烧杯？ 【方法与步骤】 1.取番茄？向日葵或其他植物的枝条,取时注意要将枝条基部浸于盛有水的塑料桶中,在水中将植物枝条切下,并将枝条基部的切口修齐？剪下的枝条移入盛有水的大烧杯中备用？ 2.立好铁架台,在滴定管夹的一端装好酸式滴定管？将新煮沸并冷却过的自来水注入酸式滴定管中,注意排水的尖端处也要充满,然后关闭活栓,记录液面刻度？ 3.剪取直径比枝条略细的橡胶管约30cm,以其一端套进滴定管的末端,管内同样灌满自来水？管的另一端连在枝条基部,注意管中不能有空气？ 4.将枝条固定在铁架台滴定管夹的另一端？ 5.打开滴定管活栓,注意观察,随着蒸腾作用的进行滴定管中的液面会逐渐下降,同时注意检测装置是否有渗漏？ 6.0.5~1h后,关闭活栓,记录液面的下降值,由此可计算单位时间内蒸腾的水分？ 7.剪下叶片,利用叶面积仪或实验33所述方法测定叶片总面积？ 8.计算单位时间？单位叶面积所蒸腾的水分,即植物的蒸腾速率,单位可用gH2O/m2·h表示？ 【注意事项】 1.剪取枝条时须在水中进行,且保证在转移时枝条基部不暴露于空气中？ 2.注意排除滴定管与橡皮管中的残留气体？ 1.2 称重法 【实验原理】 将植物枝条的基部或叶片的叶柄密封在盛有水的三角瓶或试管内,由于蒸腾作用带走水分而引起重量下降,因此通过连续监测体系的重量变化即可测得蒸腾速率？ 【材料与用品】 番茄？向日葵或其他植物的枝条;电子天平(感量0.1~1 mg)？三角瓶(或试管)？剪刀？封口膜？ 【方法与步骤】 1.在待测植株上选一枝条,将枝条的基部浸入水中将其切下,并将枝条基部的切口修齐？剪下的枝条移入盛有水的大烧杯中备用？ 2.准备三角瓶(或试管)一只,三角瓶中倒入新煮沸并冷却过的自来水？ 3.将枝条插入三角瓶中,并用封口膜密封？ 4.将插有枝条的三角瓶放到电子天平上,记录初始重量,并连续观察重量的变化,在分辨率较高的电子天平上(如0.1mg)会观察到读数的连续下降？ 5.约10min后,记录下重量的变化？ 6.同实验1 1,测量叶面积后计算出植物的蒸腾速率？ 【注意事项】 1.电子天平的灵敏度决定了该实验的精确度,因此应尽量使用灵敏度较高的天平？ 2.该方法尤其适合于测定较小枝条的蒸腾速率？ 【思考题】 1.将植物放到强光？黑暗？有风？密闭等不同的环境条件下测蒸腾速率,了解环境因素对蒸腾速率的影响？ 2.考虑可通过哪些途径来降低植物的蒸腾速率？ 第二章 植物的矿质营养 实验2 植物溶液培养及缺素症的观察 【实验原理】 当植物有某些必需的矿物质元素的适量供应时,才能正常地生长发育,如缺少某一元素,便表现出缺素症,把这些必需的矿物质元素用适当的无机盐配成营养液,即能使植物正常生长,这就是溶液培养？ 【材料与用品】 高活力玉米(或番茄？向日葵)种子;烧杯(250mL？500mL)？刻度吸管(5mL？1mL)？量筒(1000mL)？黑色蜡光纸(或黑纸)？精密pH 试纸(pH5~6)(或广泛pH 试纸)？搪瓷盘(带盖)？石英砂？培养瓶(陶质盆或塑料广口瓶)？试剂瓶(500mL); 硝酸钾？硫酸镁？磷酸二氢钾？硫酸钾？硫酸钠？磷酸二氢钠？硝酸钠？硝酸钙？氯化钙？硫酸亚铁？硼酸？氯化锰？硫酸铜？硫酸锌？钼酸？盐酸？乙二胺四乙酸二钠(EDTA Na2),以上试剂均需分析纯？ 【方法与步骤】 1. 培苗 用搪瓷盘装入一定量的石英砂或洁净的河沙,将已浸泡一夜的玉米(或番茄？向日葵)种子均匀地排列在砂面上,再覆盖一层石英砂,保持湿润,然后放置在温暖处发芽？第*片真叶完全展开后,选择生长一致的幼苗,小心地移植到各种缺素培养液中,移植时注意勿损伤根系？ 2. 配制大量元素及铁的贮备液 用蒸馏水按表2 1分别配制？ 表2-1 大量元素及铁贮备液配制表 微量元素贮备液按以下配方配制:称取H3BO4 2.86g？MnCl2·4H2O1.81g？CuSO4·5H2O0.08g？ZnSO4·7H2O0.22g？H2MoO4·H2O0.09g,溶于1L蒸馏水中？配好以上贮备液后,再按表2 2配成完全培养液和缺乏某元素的培养液(用蒸馏水)？ 表2-2 完全培养液和各种缺素培养液配制表贮备液 3. 取7个1000mL的塑料广口瓶,分别装入配制的完全培养液及各种缺素培养液900mL,贴上标签,写明日期？然后把广口瓶分别用黑色蜡光纸(或黑纸)包起来(黑面向里)(或用报纸包3层),用0.3mm 的橡胶垫做成瓶盖,并用打孔器在瓶盖中间打一个圆孔,把选好的植株去掉胚乳,并用棉花缠裹住茎基部,小心地通过圆孔固定在瓶盖上,使整个根系浸入培养液中,每瓶放3株,装好后将培养瓶放在阳光充足？温度适宜(20~25℃)的地方,培养21~28d？ 4. 实验开始以后每两天观察一次,用精密pH 试纸测试培养液的pH,如pH 高于6,应以稀盐酸调整到pH5~6之间(注意记录缺乏必需元素时所表现的症状及*先出现症状的部位)？培养液每7d换一次,为使根部生长良好,*好应在盖与溶液之间保留一定空隙,以利通气？待每个缺素培养液中的幼苗出现明显的症状后,将缺素培养液一律更换为完全培养液,观察症状逐渐消失的情况,按表2-3记录结果？ 表2-3 实验观察记录表 【思考题】 1. 为什么说溶液培养是研究矿质营养的重要方法? 2. 阐明哪些矿质元素缺乏症首先呈现在嫩叶中,而哪些呈现在老叶中,并分析其原因？ 3. 培养液要经常通气有何意义? 4. 营养液用EDTA Fe有何优点?如用一般铁盐,溶液pH 高时有何不利? 5.比较溶液培养和砂基培养的优缺点？ 实验3 植物对离子的选择性吸收 【实验原理】 植物根对不同离子的吸收量是不同的,即使是同一种盐类,对其阳离子与阴离子的吸收量也不相同？本实验即利用植物对不同盐类的阴？阳离子吸收量的不同,从而改变溶液的pH 来确定这一吸收特性,该实验也使我们了解什么是生理酸性盐？生理碱性盐和生理中性盐？ 【材料与用品】 预先在自来水中培养好的根系茂盛的洋葱鳞茎(或小麦等其他植物);pH 计(精密pH 试纸)？广口瓶(或其他培养用的器具)？试剂瓶？量筒？烧杯？洗瓶？ 吸水纸？移液管; 0.01mg/mL(NH4)2SO4 溶液？0.01mg/mL NaNO3 溶液？ 【方法与步骤】 1. 材料准备 在实验前约21d培养具有完整根系的植物？ 2. 测定溶液的原始pH 实验开始时吸取0.01mg/mL浓度的(NH4)2SO4 和NaNO3 各150mL分别置于两个200mL的广口瓶中,另一个广口瓶中放蒸馏水150mL,然后用pH 计(或精密pH 试纸)测定以上溶液或蒸馏水的原始pH？ 3. 测定植物吸收离子之后溶液的pH 取3株根系发育完善的？大小相似的洋葱(或小麦等其他植物),分别放于上述3个广口瓶中,在温室下培养3~7d后用pH 计测溶液的pH,实验结果按表3 1记录？ 表3-11 植物从盐溶液中吸收离子前后溶液的狆犎的变化 【注意事项】 1. 材料应生长良好？大小一致？根系发达？ 2. 为了避免根系的分泌作用影响实验结果,故用蒸馏水做对照,将上述pH 变化加？
定价：26.0
ISBN：9787030440815
作者：侯福林 编
版次：3
出版时间：2015-05
内容提要：
本书依据高等师范院校植物生理学教学大纲,在多年实践和研究的基础上编写而成？全书分基础性实验？综合性实验和研究性实验三部分,共81个实验,涉及植物生理学的基本原理？基础知识和基本实验技能,以利于培养学生分析问题和解决问题的能力？
目录：
目 录 第三版前言 第*部分 基础性实验 第*章 植物的水分代谢 2 实验1 蒸腾速率的测定 2 第二章 植物的矿质营养 4 实验2 植物溶液培养及缺素症的观察 4 实验3 植物对离子的选择性吸收 6 实验4 单盐毒害及离子拮抗作用 7 第三章 光合作用 8 实验5 光合作用的条件及产物 8 实验6 叶绿体色素的提取？分离及理化性质的鉴定 9 第四章 植物的呼吸作用 11 实验7 呼吸速率的测定———广口瓶法 11 实验8 多酚氧化酶活性的测定 12 实验9 愈创木酚过氧化物酶(GPX)活力测定 13 第五章 植物生长物质 15 实验10 赤霉素和脱落酸对种子萌发的影响 15 第六章 植物的生长生理 17 实验11 种子生活力的快速测定 17 实验12 种子萌发过程中淀粉？脂肪？蛋白质的转化 19 第七章 植物的生殖生理 22 实验13 植物光周期反应类型的测定 22 第八章 植物的成熟与衰老生理 24 实验14 维生素C含量的测定 24 实验15 果蔬中有机酸含量的测定 25 实验16 植物激素对器官脱落的调节作用 27 植物生理学实验教程(第三版) 第九章 植物的逆境生理 30 实验17 低温对植物的伤害 30 实验18 植物组织中丙二醛含量的测定 31 第二部分 综合性实验 第十章 植物水分状况的测定 33 实验19 植物含水量的测定 33 实验20 植物相对含水量的测定 33 实验21 植物组织水势的测定 34 实验22 植物组织渗透势的测定 37 第十一章 氮素缺乏对植物生命活动的影响 40 实验23 植物体内硝态氮含量的测定 40 实验24 根系体积的测定 41 实验25 根系活力的测定 42 实验26 硝酸还原酶的提取和测定 46 实验27 细胞有丝分裂指数的测定 47 第十二章 植物光合性能的测定 49 实验28 植物叶片光合速率及其气体交换参数的测定 49 实验29 植物光响应曲线和CO2响应曲线的制作 51 实验30 Chla与Chlb含量的测定(分光光度法) 54 实验31 乙醇酸氧化酶活性测定 56 实验32 光呼吸速率的测定 57 实验33 RuBP羧化酶羧化活性的测定 59 实验34 PEP羧化酶活性的测定 60 实验35 叶绿素荧光动力学技术的应用 62 实验36 植物叶面积的测定 64 第十三章 植物激素的生物鉴定及对生长发育的影响 66 实验37 IAA和ABA的生物鉴定———小麦胚芽鞘法 66 实验38 GA3？CTK？ABA生物鉴定———莴苣种子的发芽试验 68 实验39 GA3诱导大麦种子α 淀粉酶的合成 69 实验40 2,4 二氯苯氧乙酸(2,4 D)对拟南芥幼苗生长的影响 70 实验41 赤霉素对植物花粉体外萌发的影响 73 第十四章 植物生长物质在生产实践中的应用 75 实验42 打破休眠与抑制萌发 75 实验43 促进生长与控制徒长 76 实验44 促进插条生根 78 实验45 选择除草 79 实验46 化学杀雄 79 实验47 球茎(根)花卉的花期调节 80 实验48 防止落花落果 80 实验49 切花的延衰保鲜 81 实验50 黄瓜性别分化 82 实验51 果实催熟 83 第十五章 植物组织培养综合实验技术 85 实验52培养基的配制 85 实验53 灭*？消毒与接种 88 实验54 植物离体培养的形态发生调控与实验观察 91 实验55 试管植株的驯化与移栽 93 第十六章 植物成熟与衰老的某些生理生化变化 95 实验56 ACC含量的测定 95 实验57 H2O2含量的测定 96 实验58 O2产生速率的测定 97 第十七章 逆境条件下植物幼苗的某些生理生化变化 99 实验59 实验材料及胁迫处理 99 实验60 植物细胞质膜透性的测定(电导率法) 99 实验61 脯氨酸含量的测定 100 实验62 SOD活性的测定 101 实验63 过氧化氢酶活性测定 103 实验64 还原型谷胱甘肽含量的测定 104 实验65 谷胱甘肽还原酶活性的测定 105 实验66 抗坏血酸过氧化物酶活性的测定 107 实验67 质膜H+ ATPase水解活性的测定 108 第三部分 研究性实验 实验68 光和K+ 对气孔开度的影响 112 实验69 验证NaCl对盐生植物生长的促进作用 112 实验70 C4植物的筛选 113 实验71 环境因素对植物光合速率的影响 113 实验72 延长果实贮藏时间 114 实验73 观察植物的向性运动 114 实验74 观察植物激素或生长调节剂对植物生长发育的影响 114 实验75 NaCl对种子萌发的影响 115 实验76 胡萝卜体细胞胚发生及植株再生体系的建构 115 实验77 设计无病毒苗培养和产业化生产的具体方案 116 实验78 植物生长调节物质在农业和林业生产中的应用情况调查 117 实验79 ABA对植物抗旱性的影响 118 实验80 塑料大棚栽培中如何调节光？温度？水？肥等因子以达到高产目的 118 实验81 调查目前农业生产中化肥的使用对土壤与环境的影响 118 附录 119 附录1 常用有机溶剂及其主要性质 119 附录2 常用的缓冲溶液 120 附录3 植物组织和细胞培养常用基本培养基成分 122 附录4 实验报告范文 123 参考文献 126
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第*部分 基础性实验 第*章 植物的水分代谢 实验1 蒸腾速率的测定 蒸腾速率是指植物在单位时间内单位叶面积蒸腾掉的水分,是衡量植物需水量的重要指标,受到光照？温度？湿度等许多环境条件的影响？目前测定蒸腾速率的方法很多,如稳态气孔计(steadystateporometer)就是测定蒸腾速率的常规仪器,一般的光合仪也可测定蒸腾速率(实验28),下面介绍两种简易的测定离体叶片或枝条蒸腾速率的方法？ 1 1 蒸腾计法 【实验原理】 蒸腾计是自制装置,利用酸式滴定管制成,将植物枝条通过橡皮管与盛有水的酸式滴定管连接起来,由于蒸腾作用会引起滴定管中水分的减少,由此可计算蒸腾速率？ 【材料与用品】 番茄？向日葵或其他植物的枝条;酸式滴定管？滴定管夹？铁架台？橡皮管？剪刀？烧杯？ 【方法与步骤】 1.取番茄？向日葵或其他植物的枝条,取时注意要将枝条基部浸于盛有水的塑料桶中,在水中将植物枝条切下,并将枝条基部的切口修齐？剪下的枝条移入盛有水的大烧杯中备用？ 2.立好铁架台,在滴定管夹的一端装好酸式滴定管？将新煮沸并冷却过的自来水注入酸式滴定管中,注意排水的尖端处也要充满,然后关闭活栓,记录液面刻度？ 3.剪取直径比枝条略细的橡胶管约30cm,以其一端套进滴定管的末端,管内同样灌满自来水？管的另一端连在枝条基部,注意管中不能有空气？ 4.将枝条固定在铁架台滴定管夹的另一端？ 5.打开滴定管活栓,注意观察,随着蒸腾作用的进行滴定管中的液面会逐渐下降,同时注意检测装置是否有渗漏？ 6.0.5~1h后,关闭活栓,记录液面的下降值,由此可计算单位时间内蒸腾的水分？ 7.剪下叶片,利用叶面积仪或实验33所述方法测定叶片总面积？ 8.计算单位时间？单位叶面积所蒸腾的水分,即植物的蒸腾速率,单位可用gH2O/m2·h表示？ 【注意事项】 1.剪取枝条时须在水中进行,且保证在转移时枝条基部不暴露于空气中？ 2.注意排除滴定管与橡皮管中的残留气体？ 1.2 称重法 【实验原理】 将植物枝条的基部或叶片的叶柄密封在盛有水的三角瓶或试管内,由于蒸腾作用带走水分而引起重量下降,因此通过连续监测体系的重量变化即可测得蒸腾速率？ 【材料与用品】 番茄？向日葵或其他植物的枝条;电子天平(感量0.1~1 mg)？三角瓶(或试管)？剪刀？封口膜？ 【方法与步骤】 1.在待测植株上选一枝条,将枝条的基部浸入水中将其切下,并将枝条基部的切口修齐？剪下的枝条移入盛有水的大烧杯中备用？ 2.准备三角瓶(或试管)一只,三角瓶中倒入新煮沸并冷却过的自来水？ 3.将枝条插入三角瓶中,并用封口膜密封？ 4.将插有枝条的三角瓶放到电子天平上,记录初始重量,并连续观察重量的变化,在分辨率较高的电子天平上(如0.1mg)会观察到读数的连续下降？ 5.约10min后,记录下重量的变化？ 6.同实验1 1,测量叶面积后计算出植物的蒸腾速率？ 【注意事项】 1.电子天平的灵敏度决定了该实验的精确度,因此应尽量使用灵敏度较高的天平？ 2.该方法尤其适合于测定较小枝条的蒸腾速率？ 【思考题】 1.将植物放到强光？黑暗？有风？密闭等不同的环境条件下测蒸腾速率,了解环境因素对蒸腾速率的影响？ 2.考虑可通过哪些途径来降低植物的蒸腾速率？ 第二章 植物的矿质营养 实验2 植物溶液培养及缺素症的观察 【实验原理】 当植物有某些必需的矿物质元素的适量供应时,才能正常地生长发育,如缺少某一元素,便表现出缺素症,把这些必需的矿物质元素用适当的无机盐配成营养液,即能使植物正常生长,这就是溶液培养？ 【材料与用品】 高活力玉米(或番茄？向日葵)种子;烧杯(250mL？500mL)？刻度吸管(5mL？1mL)？量筒(1000mL)？黑色蜡光纸(或黑纸)？精密pH 试纸(pH5~6)(或广泛pH 试纸)？搪瓷盘(带盖)？石英砂？培养瓶(陶质盆或塑料广口瓶)？试剂瓶(500mL); 硝酸钾？硫酸镁？磷酸二氢钾？硫酸钾？硫酸钠？磷酸二氢钠？硝酸钠？硝酸钙？氯化钙？硫酸亚铁？硼酸？氯化锰？硫酸铜？硫酸锌？钼酸？盐酸？乙二胺四乙酸二钠(EDTA Na2),以上试剂均需分析纯？ 【方法与步骤】 1. 培苗 用搪瓷盘装入一定量的石英砂或洁净的河沙,将已浸泡一夜的玉米(或番茄？向日葵)种子均匀地排列在砂面上,再覆盖一层石英砂,保持湿润,然后放置在温暖处发芽？第*片真叶完全展开后,选择生长一致的幼苗,小心地移植到各种缺素培养液中,移植时注意勿损伤根系？ 2. 配制大量元素及铁的贮备液 用蒸馏水按表2 1分别配制？ 表2-1 大量元素及铁贮备液配制表 微量元素贮备液按以下配方配制:称取H3BO4 2.86g？MnCl2·4H2O1.81g？CuSO4·5H2O0.08g？ZnSO4·7H2O0.22g？H2MoO4·H2O0.09g,溶于1L蒸馏水中？配好以上贮备液后,再按表2 2配成完全培养液和缺乏某元素的培养液(用蒸馏水)？ 表2-2 完全培养液和各种缺素培养液配制表贮备液 3. 取7个1000mL的塑料广口瓶,分别装入配制的完全培养液及各种缺素培养液900mL,贴上标签,写明日期？然后把广口瓶分别用黑色蜡光纸(或黑纸)包起来(黑面向里)(或用报纸包3层),用0.3mm 的橡胶垫做成瓶盖,并用打孔器在瓶盖中间打一个圆孔,把选好的植株去掉胚乳,并用棉花缠裹住茎基部,小心地通过圆孔固定在瓶盖上,使整个根系浸入培养液中,每瓶放3株,装好后将培养瓶放在阳光充足？温度适宜(20~25℃)的地方,培养21~28d？ 4. 实验开始以后每两天观察一次,用精密pH 试纸测试培养液的pH,如pH 高于6,应以稀盐酸调整到pH5~6之间(注意记录缺乏必需元素时所表现的症状及*先出现症状的部位)？培养液每7d换一次,为使根部生长良好,*好应在盖与溶液之间保留一定空隙,以利通气？待每个缺素培养液中的幼苗出现明显的症状后,将缺素培养液一律更换为完全培养液,观察症状逐渐消失的情况,按表2-3记录结果？ 表2-3 实验观察记录表 【思考题】 1. 为什么说溶液培养是研究矿质营养的重要方法? 2. 阐明哪些矿质元素缺乏症首先呈现在嫩叶中,而哪些呈现在老叶中,并分析其原因？ 3. 培养液要经常通气有何意义? 4. 营养液用EDTA Fe有何优点?如用一般铁盐,溶液pH 高时有何不利? 5.比较溶液培养和砂基培养的优缺点？ 实验3 植物对离子的选择性吸收 【实验原理】 植物根对不同离子的吸收量是不同的,即使是同一种盐类,对其阳离子与阴离子的吸收量也不相同？本实验即利用植物对不同盐类的阴？阳离子吸收量的不同,从而改变溶液的pH 来确定这一吸收特性,该实验也使我们了解什么是生理酸性盐？生理碱性盐和生理中性盐？ 【材料与用品】 预先在自来水中培养好的根系茂盛的洋葱鳞茎(或小麦等其他植物);pH 计(精密pH 试纸)？广口瓶(或其他培养用的器具)？试剂瓶？量筒？烧杯？洗瓶？ 吸水纸？移液管; 0.01mg/mL(NH4)2SO4 溶液？0.01mg/mL NaNO3 溶液？ 【方法与步骤】 1. 材料准备 在实验前约21d培养具有完整根系的植物？ 2. 测定溶液的原始pH 实验开始时吸取0.01mg/mL浓度的(NH4)2SO4 和NaNO3 各150mL分别置于两个200mL的广口瓶中,另一个广口瓶中放蒸馏水150mL,然后用pH 计(或精密pH 试纸)测定以上溶液或蒸馏水的原始pH？ 3. 测定植物吸收离子之后溶液的pH 取3株根系发育完善的？大小相似的洋葱(或小麦等其他植物),分别放于上述3个广口瓶中,在温室下培养3~7d后用pH 计测溶液的pH,实验结果按表3 1记录？ 表3-11 植物从盐溶液中吸收离子前后溶液的狆犎的变化 【注意事项】 1. 材料应生长良好？大小一致？根系发达？ 2. 为了避免根系的分泌作用影响实验结果,故用蒸馏水做对照,将上述pH 变化加？